受體本科線

『壹』 什麼是寫作受體意識

1、寫作受體接受的對象是寫作主體通過寫作活動生產的產品——文章,
2、受體的接受活動是在閱讀文章的基礎上進行和實現的。

寫作「受體」的閱讀（欣賞），是寫作主體勞動成果的接受者，這與讀者（欣賞者）的身份是一致的。 傳統討論的受體，是讀者。寫作主體也閱讀自已的勞動成果，閱讀自已的作品，不叫受體。只有去閱讀別人的作品（文本），我們才稱之曰「受體」。因為作家、詩人也要閱讀與欣賞。可以通過寫作受體意識流動圖是，用舊的知識和已有經驗為基本建構零件,用鏈式圖的形式更清晰地反映出相關受體理論的新舊知識點之間實質性的邏輯關系,其實質是對原有寫作受體的認知結構的一種刺激, 使知識點按新秩序排列。

受體與讀者（欣賞者）的區別

1）讀者是相對於文章而存在，受體相對於寫作主體而存在。
2）「受體」對寫作活動的介入的時間不再是單純的「閱讀後」，在現代傳媒條件下，他們可以在主體寫作過程中「介入」。（如秘書為領導寫講話稿，領導或班子成員在秘書寫作前和寫作中會提出建設性的意見；如新聞報導，受眾會參與，熱線電話。沒有受體參與的寫作活動是不完全的。如電視劇寫完開拍也會邊拍邊接納受體的意見）。
3） 寫作活動結束，其寫作主體不復存在，則受體轉變為傳統意義上的讀者（欣賞者）。

受體的分類
1）指定讀者、特定讀者、一般讀者、批審讀者
2）基本讀者、可能性讀者、理想讀者、非理想讀者
3）多層讀者

『貳』 阝腎上腺素受體向下調節的作用是什麼意思

你打新浪先修比上上調節的作用是什麼意思？這些新單線綉的的作用，結果

『叄』 什麼是受體結合分析

體結合分析

一、直接的細胞表面受體結合

在4℃下脂蛋白與LDL受體結合, 但脂蛋白受體復合物尚未內在化(internalized),

脂蛋白與LDL受體處於平衡狀態,因而可進行平衡結合研究。此項研究的數據可用Scatchard分析來測定脂蛋白與LDL受體的親合力及每個細胞受體結合脂蛋白的量。所用脂蛋白濃度取決於平衡解離常數(Kd), 應採用大致與Kd數值相等的濃度。以下是常用的放射標記脂蛋白濃度范圍: 人類LDL, 0.25-12ug/ml; 人類III型β-極低密度脂蛋白(β-VLDL), 0.2-10ug/ml; 狗Apo E HDLC, 0.01-1.2ug/ml; 狗β-VLDL,0.54-4ug/ml; 及Apo E-雙十二醯磷酸膽鹼(DMPC)復合物, 0.005-1.0ug/ml。(所有濃度基於Lowry等人的蛋白測定法)

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方案4: 用於研究125I-標記脂蛋白與完整細胞表面LDL受體平衡結合的方法

(1). 實驗前, 將帶細胞的培養皿置一大盒冰上的金屬托盤上預冷10-15分鍾。

(2). 在15ml塑料錐形管內制備並在冰上預冷15分鍾後的脂蛋白溶液組成是:DMEM-Hepes-LPDS[N-2羥乙基哌嗪-N'-2磺酸乙烷(Hepes), (代替重碳酸鹽)pH7.4緩沖的DMEM, 含10%LPDS]。它含有為雙份培養皿准備的6-12種不同濃度的125I-標記脂蛋白。每種濃度的125-I標記脂蛋白的第三塊培養皿內的溶液通過加入20-100倍過量非標記配體來測定非特異結合。

(3). 當細胞培養皿在冰上時, 棄去細胞培養基, 用含放射標記脂蛋白的培養基替代。可採用在16mm皿內加0.25ml, 22mm皿內加0.45ml, 35mm皿內加0.95ml, 60mm皿內加1.9ml。從每管中取兩份(每份20ul)測放射活性, 他們用於Scatchard分析法的計算及確定有放射活性脂蛋白的濃度。在冰上孵育並輕搖冷浴中的細胞3-5小時。(4℃下多數脂蛋白的受體結合在5-6小時內達到平衡, 但對多數情況而言, 孵育3-4小時足

以達到平衡)。

(4). 孵育終止時, 仍置細胞於冰上,棄去培養基,用冷的PBS-BSA(每mlPBS含2mg BSA)洗滌單層細胞三次。繼之用相同緩沖液孵育10分鍾, 並用冷PBS快速洗滌, 先後重復兩次。洗滌細胞時, 用與重復分配器相連的長管進行。洗滌液沿孔壁流下, 覆蓋所用細胞。細胞與培養皿的附著力差別很大, 所以對一些培養物必須十分小心。

(5). 將細胞從冰上移開, 用重復分配器(加樣器)在每孔中加入0.1M NaOH 0.5ml, 用手輕搖平皿, 以確保整個平皿都被NaOH覆蓋。封蓋, 在室溫下孵育10分鍾使細胞溶解。

(6). 將已溶細胞移入12×75mm管內, 用0.5ml NaOH洗各孔一次, 將洗液倒入管內。 (7). 塞好試管, 在r-計數儀上進行125I計數。現在多數計數器可進行重復實驗平均取值, 消除背景以及計算100%對照的百分比, 這可節省手工計算的時間。

(8). 在測定蛋白濃度之前將試管置4℃保存, 可使用根據Technicon Lowry方案設計的Technicon自動分析II型儀, 用BSA作標准。此自動分析儀直接從12×75mm原管中自動取樣。當採用的是單層細胞且屬接觸抑制(如成纖維細胞)或為接近匯合時,每孔中的細胞蛋白幾乎完全一樣, 因而只需進行抽樣測定。但當使用非接觸抑制細胞(如平滑肌細胞)或在培養中有不分化的細胞(如巨噬細胞)時, 因各孔之間變化大而需逐管分析。

(一)、Scatchard分析

平衡結合研究得來的數據可通過Scatchard分析進行線性化。根據這一分析可確定125I-標記配基與受體結合的親合力常數(Kd)和受體飽和時受體結合脂蛋白的數量。通過在X軸上標出"毫微克結合量(B)及在Y軸上標繪結合/游離比(B/F),如果在平衡時配基與受體均為純體, 並且呈簡單的雙分子反應(如LDL與LDL受體的平衡結合), 那麼就可得到一條直線。現有一種用於稱為Scatdata的IBMPC的相互作用的BASIC程序, 它可將直接結合試驗的原始c.p.m數據轉化為Scatchard坐標系, 通過線性回歸計算出常數、最大結合量以及相關系數。

假如B對B/F作圖所得顯然不是一條直線, 那麼配體-受體結合的分析就更為復雜。在這種情況下,可能脂蛋白存在不均一性, 或存在一種以上的受體(或其他結合位點)。不幸的是象Scatchard坐標一類的簡單圖解不適合分析復合恆溫線。

(二)、競爭性結合分析

在競性結合試驗中, 未標記的與125I-標記的脂蛋白競爭性結合細胞表面的LDL受體。本方法與方案4所列的直接結合試驗相似, 只有以下幾點差異:

(1). 冰上孵育只進行2小時。

(2). 125I-標記脂蛋白濃度不變與其Kd值相近, 而未標記的競爭配體濃度遞增。未標記脂蛋白濃度應在小於標記脂蛋白Kd值及大於或等於20倍Kd值之間。

(3). 每種濃度的競爭物應設有22孔, 同樣也應設有含125I標記脂蛋白的而不是未標記脂蛋白(100%對照)的雙孔。含有125I-標記脂蛋白及100倍過量未標記脂蛋白的孔被用來測定125I-標記脂蛋白的非特異結合。應常規用100%及非特異結合對照的四個復判孔。實驗開始及結束時分別設2個, 以幫助校正任何系統誤差。

(4). 競爭物的5%競爭點(抑制125I-標記脂蛋白結合5%時所需的脂蛋白濃度)可通過如下數學方法確定:將競爭物的濃度(ug/ml)轉化為對數值, 將百分比結合值轉化為概率單位。概率單位轉化可根據發表的表格進行手工計算。幾種統計學計算機圖表程序也可進行概率單位轉換(Plotit, 科學程序公司, Sigma Plot,JandelScientific)。 以概率轉換的結合百分比數據為Y軸及以濃度對數為X軸.得到一條直線,通過線性回歸可確定50%值。上述計算機圖表程序具有可轉換、制圖及確定和列印50%值的優點。

(三)、用抗體進行受體結合研究的分析法

特異的多克隆和單克隆抗體是研究脂蛋白受體相互作用的有力工具。特異多克隆抗體被用來證實小鼠腹膜巨噬細胞上特有的通過LDL受體介導β-VLDL攝取, 同時證實加入外源性Apo E後β-VLDL能與LDL受體相關蛋白結合。單克隆抗體被用來描繪Apo B100及Apo E的受體結合域以及確定脂蛋白中哪種載脂蛋白與受體結合。這類研究中所用的抗體必須是高親合力抗體,它與載脂蛋白或受體的親合力必須大於或等於脂蛋白與受體的親合力。

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方案5: 用抗體進行結合研究的方法

(1). 用於受體結合測定的抗體必須是純化的IgG或Fab片斷,因為即使在抗血清或腹水中的少量內源性脂蛋白都可能與125I-標記的脂蛋白競爭, 造成假陽性結果。由於巨噬細胞具有Fc受體, 在研究巨噬細胞培養物的抗體時應採用Fab片斷代替IgG。

(2). 若抗體是針對載脂蛋白的, 將抗體與125I-標記脂蛋白在DMEM-Hepes-LPDS中混合, 室溫孵育1小時, 冷卻溶液, 按方案4所述將其加至預冷的細胞上。 (3). 若抗體是針對受體設計的, 用DMEM-Hepes-LPDS將抗體稀釋至要求的濃度, 在冰上冷溶液中與細胞一起預孵育1小時。備好10倍濃縮的125I-標記脂蛋白的DMEM -Hepes-LPDS溶液, 將其直接加入平皿, 在冰上再孵育2-3小時。例如, 要制備1ml培養基中125I-標記LDL終濃度為2ug/ml的溶液, 則加900ul含抗體培養基進行1小時預孵育, 隨後加入100ul 20ug/ml的125I標記LDL溶液。

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二、結合、內在化(internalization)及降解分析

125I-標記脂蛋白與培養細胞在37℃一起孵育時, 脂蛋白被受體結合、內在化並在溶酶體內降解。125I-標記載脂蛋白降解為小分子多肽和氨基酸, 混匿於培養基之中。大約在37℃下2小時後達到穩定狀態, 結合於受體上及含於細胞內的125I-標記脂蛋白的量固定不變。但隨孵育時間延長, 培養基中的降解產物持續增長。可採用較長的孵育時間, 通常用5小時或16小時(過夜)孵育。 37℃下試驗與4℃下試驗(見方案4)相似,但有以下不同:

(1). 脂蛋白與LDL受體的外顯結合常數在37℃較高,因而應採用較高濃度的脂蛋白。

(2). 孵育在37℃ 7%CO2培養箱內進行, 所以培養基內不含Hepes,而用含DMEM的NaHCO3緩沖液。

(3). 脂蛋白與培養基必須避免細菌污染, 尤其是過夜孵育更應注意。使用滅菌的DMEM-LPDS, 並用預沖洗過的帶醋酸纖維膜(0.45um用於LDL和HDLc, 0.8um用於VLDL和β-VLDL)的注射過濾器濾過脂蛋白貯存液。

(4). 在加入細胞之前, 含脂蛋白的培養基應達到或接近37℃。

(5). 孵育之後, 將細胞置冰上的金屬盤中冷卻。孵育培養基移出並留作降解分析用(方案7), 洗滌細胞(方案4)。

(一)、結合脂蛋白的釋放

在37℃下與125I-標記脂蛋白一起進行孵育的細胞含有表面結合與內在化的脂蛋白, 為了區分它們, 在用0.1M NaOH溶解細胞之前, 應使表面結合的脂蛋白從細胞上被釋放。

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方案6: 表面結合與內在化脂蛋白的測定

(1). 孵育之後, 將細胞冷卻(冰上15分鍾), 移取孵育培養基作降解測定。 (2). 用冷PBS-BSA迅速洗滌細胞三次,隨後進行兩次冰上PBS-BSA孵育,各10分鍾。

(3). 加入脂蛋白分離試劑, 冰上冷孵育並輕搖1小時。

(a). LDL可用4mg/ml硫酸右旋糖酐或10mg/ml的肝素PBS溶液將其從細胞表面受體上釋放出來。

(b). 親合力比LDL高的脂蛋白, 如含Apo E的脂蛋白, 可用PBS內含30mg/ml的磷酸鈉玻璃(六甲基磷酸鈉, 9-V030,J,T.Baker或Phosphate Glass, P-8510,Sigma)使之釋放。

(4). 移取一份已知量至12×75mm試管,進行r-計數。

(5). 吸出剩下的溶液, 用PBS洗滌單層細胞兩次。加入0.1M NaOH, 以後按方案4繼續進行。

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(二)、降解分析

與LDL受體結合後, 125I-標記脂蛋白被內在化並在溶酶體內降解成氨基酸。降解分析法測定釋放到組織培養基中的125I-標記酪氨酸。這一分析法的原理是:用三氯醋酸(TCA)沉澱法除去培養基中殘留的完整125I-標記脂蛋白, 去除任何游離的125I, 然後測定125I-標記酪氨酸及小分子多肽的放射活性。

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方案7: 脂蛋白降解的測定

(1). 對兩套12×75mm和一套13×100mm玻璃試管預先編號。

(2). 在其中一套12×75mm試管中加入PBS-BSA溶液,使其與細胞中的孵育培養基總體積為1ml。細胞置於冰上之後,將培養基移入含PBS-BSA液且已編好號的12×75mm試管中, 洗滌單層細胞, 按方案4進行計數。

(3). 用連續加樣器在每支裝有1ml培養基PBS-BSA的試管內加入200ul 50%TCA, 渦旋混合, 4℃孵育30分鍾。

(4). 在4℃下2000g離心15分鍾, 形成TCA沉澱。將1.0ml上層清液移入已編好號的13×100mm試管。用連續加樣器在每管中加入10ul 40%KI和40ul 30%H2O2。渦旋混合,室溫孵育5-10分鍾。

(5). 每管中加入2ml CHCl3, 徹底旋混(上層水相應為淡粉紅或淡黃色, 不是深褐色,若呈深棕色, 則需重新旋混)。H2O2將[125I]碘化物轉化為[125I]碘, 後者可用氯仿萃取。用100g-200g離心5分鍾將水相與氯仿相分開, 吸取625ul上層水相至第二套12×75mm試管內, 塞好, 進行放射活性計數。總降解量=c.p.m×2。

『肆』 葯物靶點的分布情況線粒體上有多少受體

...這個太難得回答了- =。。。

最終作用於線粒體的葯物靶點有很多。。。

包括細胞質中的。。

最典型的就是 線粒體凋亡一類的。。。還有有關呼吸鏈的。。。有關三羧酸循環的。。有關ROS的等等。。。太多了= =

我覺得你好像混淆了一個 概念。。

靶點不等於受體

受體是相對於配體而言的一個概念。。

而葯物的靶點。。怎麼說呢，基本上只要是你身體裡面特有的物質。就可以作為靶點。。
例如各種蛋白質。。。各種糖蛋白 。。。

『伍』 神經遞質與受體結合後神經遞質去哪了

神經遞質與受體結合後會失活。

進入突觸間隙的乙醯膽鹼作用於突觸後膜發揮生理作用後，就被膽鹼酯酶水解成膽鹼和乙酸，這樣乙醯膽鹼就被破壞而推動了作用，這一過程稱為失活。

去甲腎上腺素進入突觸間隙並發揮生理作用後，一部分被血液循環帶走，再在肝中被破壞失活；另一部分在效應細胞內由兒茶酚胺內由兒茶酚胺位甲基移位酶和單胺氧化酶的作用而被破壞失活；但大部分是由突觸前膜將去甲腎上腺素再攝取，回收到突觸前膜處的軸漿內並重新加以利用。

多巴胺的失活與去甲腎上腺素的失活相似，它也是由兒茶酚胺氧位甲基移位酶和單胺氧化酶的作用而被破壞失活。突觸前膜也能再攝取多巴胺加以重新利用。

(5)受體本科線擴展閱讀：

乙醯膽鹼和胺類遞質都在有關合成酶的催化下合成，且合成過程多在胞質中進行，然後儲存於突觸囊泡內。肽類遞質則在基因調控下，通過核糖體的翻譯和翻譯後的酶切加工等過程而形成。遞質與受體結合及生效後很快被通過酶促降解和突觸前末梢重攝取等方式消除。

例如，附著於突觸後膜的乙醯膽鹼酯酶能迅速水解乙醯膽鹼為膽鹼和乙酸，生成的膽鹼則被重攝取回末梢內，用於重新合成新遞質。去甲腎上腺素的消除主要通過末梢的重攝取，少量通過酶解失活。肽類遞質的消除主要依靠酶促降解。

參考資料來源：網路-神經遞質

參考資料來源：網路-腦神經遞質

『陸』 死亡受體及線粒體介導的caspase活化通路有何異同

死亡受體家族(DeathReceptorFamily)： 該家族的胞內部分都含有約80個氨基酸殘基組成的介導凋亡區域，即死亡結構域，其家族成員包括Fas／CD95、DR5、DR4、DR3和TNFRl。當受體與相應的配體結合時，將聚合形成三聚體。死亡受體三聚體通過死亡結構域。

『柒』 受體影響寫作活動的方式與要素有哪些

第一節 寫作主體的「 受體意識」
寫作「受體」的閱讀（欣賞），是寫作主體勞動成果的接受者，這與讀者（欣賞者）的身份是一致的。但受體與讀者是有區別的。它們的區別表現在哪些地方呢？
傳統討論的受體，是讀者。寫作主體也閱讀自已的勞動成果，閱讀自已的作品，不叫受體。只有去閱讀別人的作品（文本），我們才稱之曰「受體」。因為作家、詩人也要閱讀與欣賞。
寫出來的文本是要給人看的。如同你生產的產品，要拿出去經銷。那些消費者需要你的產品么。一般來講，寫作者要研究受體的心態、愛好、趣味。一句話，你就是要研究讀者。有人說我寫的文章是給兩百年以後的人看的。你信嗎？

一、受體的含義及受體意識的作用
（一）「受體」的含義
1、含義。寫作受體即寫作行為活動的接受對象，也就是讀者。從信息傳播的角度來看，受體是信息傳遞的必要組成部分。一個信息傳遞過程是以預先設定的交際雙方作為前提和基礎的。信息傳遞的主體把信息置入一定的載體傳遞出去，直到受體把信息從一定的載體和載體符號中轉換出來，傳遞過程才算完成。這表明，盡管傳遞信息是主體獨自決定的行為，但這一行為的付諸實現，卻必須在交際的另一方——受體願意且又可能進入交際過程的前提下才具有現實性。這使受體在交際過程中獲得了不可或缺的地位，使受體與主體構成相反相成的夥伴關系。在這種關系中，受體在主體通過載體發出信息之後成為完全主動的一方，他可以自由選擇如何處理主體發出的信息。主體只能在傳遞信息的同時，在信息載體中為受體盡可能充分地接受信息提供某些條件，除此之外，別無它法。
寫作受體是指從寫作這種活動中接受信息的人。它的存在與否關繫到寫作活動能否最終完成，因此寫作受體是寫作系統中不可或缺的一個要素。英國文豪約翰生甚至說：「寫作的唯一目的，是幫助讀者更能享受或忍受生活。」（轉引自《餘光中散文》）受體是接受主體之簡稱。即詩的閱讀、詩的批評。廣義上包括詩的傳播主體，即詩的創造主體與接受主體之間的傳播媒介者。

2、受體與讀者（欣賞者）的區別
讀者是相對於文章而存在的，其閱讀習慣、審美趨向等直接受制於寫作主體的表達，盡管他們也可以通過一定的途徑將自己的感受和意見反饋到作者那裡，但其閱讀與反饋帶有「滯後性」。而受體是相對於寫作活動中的主體而存在的。受體對寫作活動的參與雖然同樣具有被動特點，但他們的變被動為主動的行為特徵更加明顯，並且他們介入的時間也不再是過去單純的「閱讀後」，在現代傳媒技術條件下，他們甚至可以在寫作行為中實施自己的介入。而寫作活動是一項特殊的活動，即使寫作主體已經「脫稿」，也並不意味著這一次寫作活動的結束，它還必須等待寫作受體的參與（閱讀認可），沒有受體參與的寫作活動是不完全的。有時來自受體方面的影響，在某些寫作活動中直接產生決定性作用。比如秘書為領導者代擬講話稿。
隨著寫作活動的結束，寫作的主體不復存在，則受體也自動轉變為傳統意義上的讀者了。
1）讀者是相對於文章而存在，受體相對於寫作主體而存在。
2）「受體」對寫作活動的介入的時間不再是單純的「閱讀後」，在現代傳媒條件下，他們可以在主體寫作過程中「介入」。（如秘書為領導寫講話稿，領導或班子成員在秘書寫作前和寫作中會提出建設性的意見；如新聞報導，受眾會參與，熱線電話。沒有受體參與的寫作活動是不完全的。如電視劇寫完開拍也會邊拍邊接納受體的意見）。
3） 寫作活動結束，其寫作主體不復存在，則受體轉變為傳統意義上的讀者（欣賞者）。

3、受體的分類
從最直觀的層面上看，受體」指的就是文章的接受者，包括文章的把關人(如編輯、領導)和廣大的讀者。這個層面的「受體」，粗略地可分為：
1）指定讀者、特定讀者、一般讀者、批審讀者
「指定讀者」，指文章所指定的讀者，它一般是某一個具體的人，或某一具體的群體。如日常書信的寫作，它的讀者是收信人；報請一類公文的寫作，它的讀者是自己的上級；通知決定一類公文，它的讀者是自己的下屬；規章制度一類文書的製作，它的讀者對象是單位、組織的每一個成員。「特定讀者」，指讀物所限定的「消費者」，它不是指向某一個人或某一個具體的群體，而是指向「某一類」。如科技文章的寫作，它的讀者是研究相關問題的專家和專業技術人員；少兒讀物，它的閱讀對象是青少年；「經濟消息」，它的讀者是從事經濟工作的有關人員。「一般讀者」，指讀物所廣泛適應的「消費者」，讀物對他們的年齡、性別、職業、文化程度、身份都沒有要求，只要具有一定的閱讀能力，並且有這方面的閱讀興趣，就可以拿來讀。「批審讀者」，主要指文章的把關人，包括單位領導人、報紙雜志以及出版社的編輯等。作者寫作，通常會考慮編輯是否同意的因素。一些特殊的文體，如公文，還得考慮領導的意志。
2）基本讀者、可能性讀者、理想讀者、非理想讀者
「基本讀者」指自己讀物所應擁有的讀者。「可能性讀者」不在基本讀者之列，但由於種種原因，有些讀者可能會讀到自己的文章，成為自己的「可能性讀者」。「理想讀者」是指完全能理解自己的寫作意圖、能接受自己獨特的表達方式的讀者，也就是平時所說的「知音」、「粉絲」。「非理想讀者」與此相反，是在理解自己寫作意圖及表達方式方面存在一定困難的讀者。
3）多層讀者
多層讀者的疊用，某種意義上說是一種敘述策略。它利用特定讀者的「接受場」以達到自己預定的敘述效果。如朱光潛寫《談美書簡》，採用的是書信體，茅盾寫《腐蝕》，採用的是日記體等。
由於劃分的標准不同，我們還可以從地區、性別、年齡上劃分。如港台讀者、大陸讀者、國外讀者；男性讀者、女性讀者；老年讀者，少兒讀者。等。

『捌』 細胞膜上的受體蛋白也走分泌蛋白路線嗎內質網高爾基體什麼的

細胞膜上的受體蛋白的合成和運輸與
分泌蛋白
相同，都是在
內質網
上的
核糖體
合成
肽鏈
，先進入內質網加工，形成有一定空間結構的蛋白質，再通過
囊泡
運輸到
高爾基體
進一步加工成熟，高爾基體通過囊泡將蛋白質運輸到細胞膜上。

『玖』 什麼是受體介導的內吞作用有什麼特點基本過程怎樣

目的
觀察刀豆素A(ConA)與小鼠腹腔巨噬細胞表面ConA受體結合、內吞、轉運及巨噬細胞自噬、凋亡的形態學變化,以探討受體介導內吞與自噬體形成和細胞凋亡之間的關系.方法
用辣根過氧化物酶(HRP)標記ConA(ConA-HRP)與小鼠腹腔巨噬細胞共孵育,不同時間取出部分巨噬細胞,制備電鏡標本,觀察.結果透射電鏡觀察表明：ConA的內吞屬於受體介導內吞；形成的內吞體有泡狀、管狀及雙層膜的線狀等形式；雙層膜的線狀結構包裹部分胞質和細胞器,形成自噬體；自噬體與溶酶體融合,而後巨噬細胞凋亡.結論受體介導內吞和自噬同凋亡之間存在一定的關系.

『拾』 通道蛋白，載體蛋白，受體蛋白三者之間的差別

差別：通道蛋白參與的只是被動運輸，在運輸過程中並不與被運輸的分子或離子相結合，也不會移動，並且是從高濃度向低濃度運輸，所以運輸時不消耗能量。

載體蛋白參與的有主動轉運和易化擴散，在運輸過程中與相應的分子特異性結合，自身的構型會發生變化，並且會移動。通道蛋白轉運速率與物質濃度成比例，且比載體蛋白介導的轉運速度更快。

通道蛋白其結構和功能狀態在細胞內外理化因子作用下，能在數毫秒至數十毫秒的時間內迅速激活開放，隨後迅速失活或關閉，載體蛋白無此特性。

分類

通道蛋白可以是單體蛋白，也可以是多亞基組成的蛋白，它們都是通過疏水的氨基酸鏈進行重排，形成水性通道。通道蛋白本身並不直接與小的帶電荷的分子相互作用，這些小的帶電荷的分子可以自由的擴散通過由脂雙層中膜蛋白帶電荷的親水區所形成的水性通道。

通道蛋白的運輸作用具有選擇性，所以在細胞膜中有各種不同的通道蛋白。通道蛋白參與的只是被動運輸，在運輸過程中並不與被運輸的分子結合，也不會移動，並且是從高濃度向低濃度運輸，所以運輸時不消耗能量。

以上內容參考：網路-通道蛋白