受体本科线
『壹』 什么是写作受体意识
1、写作受体接受的对象是写作主体通过写作活动生产的产品——文章,
2、受体的接受活动是在阅读文章的基础上进行和实现的。
写作“受体”的阅读(欣赏),是写作主体劳动成果的接受者,这与读者(欣赏者)的身份是一致的。 传统讨论的受体,是读者。写作主体也阅读自已的劳动成果,阅读自已的作品,不叫受体。只有去阅读别人的作品(文本),我们才称之曰“受体”。因为作家、诗人也要阅读与欣赏。可以通过写作受体意识流动图是,用旧的知识和已有经验为基本建构零件,用链式图的形式更清晰地反映出相关受体理论的新旧知识点之间实质性的逻辑关系,其实质是对原有写作受体的认知结构的一种刺激, 使知识点按新秩序排列。
受体与读者(欣赏者)的区别
1)读者是相对于文章而存在,受体相对于写作主体而存在。
2)“受体”对写作活动的介入的时间不再是单纯的“阅读后”,在现代传媒条件下,他们可以在主体写作过程中“介入”。(如秘书为领导写讲话稿,领导或班子成员在秘书写作前和写作中会提出建设性的意见;如新闻报导,受众会参与,热线电话。没有受体参与的写作活动是不完全的。如电视剧写完开拍也会边拍边接纳受体的意见)。
3) 写作活动结束,其写作主体不复存在,则受体转变为传统意义上的读者(欣赏者)。
受体的分类
1)指定读者、特定读者、一般读者、批审读者
2)基本读者、可能性读者、理想读者、非理想读者
3)多层读者
『贰』 阝肾上腺素受体向下调节的作用是什么意思
你打新浪先修比上上调节的作用是什么意思?这些新单线绣的的作用,结果
『叁』 什么是受体结合分析
体结合分析
一、直接的细胞表面受体结合
在4℃下脂蛋白与LDL受体结合, 但脂蛋白受体复合物尚未内在化(internalized),
脂蛋白与LDL受体处于平衡状态,因而可进行平衡结合研究。此项研究的数据可用Scatchard分析来测定脂蛋白与LDL受体的亲合力及每个细胞受体结合脂蛋白的量。所用脂蛋白浓度取决于平衡解离常数(Kd), 应采用大致与Kd数值相等的浓度。以下是常用的放射标记脂蛋白浓度范围: 人类LDL, 0.25-12ug/ml; 人类III型β-极低密度脂蛋白(β-VLDL), 0.2-10ug/ml; 狗Apo E HDLC, 0.01-1.2ug/ml; 狗β-VLDL,0.54-4ug/ml; 及Apo E-双十二酰磷酸胆碱(DMPC)复合物, 0.005-1.0ug/ml。(所有浓度基于Lowry等人的蛋白测定法)
————————————————————————————
方案4: 用于研究125I-标记脂蛋白与完整细胞表面LDL受体平衡结合的方法
(1). 实验前, 将带细胞的培养皿置一大盒冰上的金属托盘上预冷10-15分钟。
(2). 在15ml塑料锥形管内制备并在冰上预冷15分钟后的脂蛋白溶液组成是:DMEM-Hepes-LPDS[N-2羟乙基哌嗪-N'-2磺酸乙烷(Hepes), (代替重碳酸盐)pH7.4缓冲的DMEM, 含10%LPDS]。它含有为双份培养皿准备的6-12种不同浓度的125I-标记脂蛋白。每种浓度的125-I标记脂蛋白的第三块培养皿内的溶液通过加入20-100倍过量非标记配体来测定非特异结合。
(3). 当细胞培养皿在冰上时, 弃去细胞培养基, 用含放射标记脂蛋白的培养基替代。可采用在16mm皿内加0.25ml, 22mm皿内加0.45ml, 35mm皿内加0.95ml, 60mm皿内加1.9ml。从每管中取两份(每份20ul)测放射活性, 他们用于Scatchard分析法的计算及确定有放射活性脂蛋白的浓度。在冰上孵育并轻摇冷浴中的细胞3-5小时。(4℃下多数脂蛋白的受体结合在5-6小时内达到平衡, 但对多数情况而言, 孵育3-4小时足
以达到平衡)。
(4). 孵育终止时, 仍置细胞于冰上,弃去培养基,用冷的PBS-BSA(每mlPBS含2mg BSA)洗涤单层细胞三次。继之用相同缓冲液孵育10分钟, 并用冷PBS快速洗涤, 先后重复两次。洗涤细胞时, 用与重复分配器相连的长管进行。洗涤液沿孔壁流下, 覆盖所用细胞。细胞与培养皿的附着力差别很大, 所以对一些培养物必须十分小心。
(5). 将细胞从冰上移开, 用重复分配器(加样器)在每孔中加入0.1M NaOH 0.5ml, 用手轻摇平皿, 以确保整个平皿都被NaOH覆盖。封盖, 在室温下孵育10分钟使细胞溶解。
(6). 将已溶细胞移入12×75mm管内, 用0.5ml NaOH洗各孔一次, 将洗液倒入管内。 (7). 塞好试管, 在r-计数仪上进行125I计数。现在多数计数器可进行重复实验平均取值, 消除背景以及计算100%对照的百分比, 这可节省手工计算的时间。
(8). 在测定蛋白浓度之前将试管置4℃保存, 可使用根据Technicon Lowry方案设计的Technicon自动分析II型仪, 用BSA作标准。此自动分析仪直接从12×75mm原管中自动取样。当采用的是单层细胞且属接触抑制(如成纤维细胞)或为接近汇合时,每孔中的细胞蛋白几乎完全一样, 因而只需进行抽样测定。但当使用非接触抑制细胞(如平滑肌细胞)或在培养中有不分化的细胞(如巨噬细胞)时, 因各孔之间变化大而需逐管分析。
(一)、Scatchard分析
平衡结合研究得来的数据可通过Scatchard分析进行线性化。根据这一分析可确定125I-标记配基与受体结合的亲合力常数(Kd)和受体饱和时受体结合脂蛋白的数量。通过在X轴上标出"毫微克结合量(B)及在Y轴上标绘结合/游离比(B/F),如果在平衡时配基与受体均为纯体, 并且呈简单的双分子反应(如LDL与LDL受体的平衡结合), 那么就可得到一条直线。现有一种用于称为Scatdata的IBMPC的相互作用的BASIC程序, 它可将直接结合试验的原始c.p.m数据转化为Scatchard坐标系, 通过线性回归计算出常数、最大结合量以及相关系数。
假如B对B/F作图所得显然不是一条直线, 那么配体-受体结合的分析就更为复杂。在这种情况下,可能脂蛋白存在不均一性, 或存在一种以上的受体(或其他结合位点)。不幸的是象Scatchard坐标一类的简单图解不适合分析复合恒温线。
(二)、竞争性结合分析
在竞性结合试验中, 未标记的与125I-标记的脂蛋白竞争性结合细胞表面的LDL受体。本方法与方案4所列的直接结合试验相似, 只有以下几点差异:
(1). 冰上孵育只进行2小时。
(2). 125I-标记脂蛋白浓度不变与其Kd值相近, 而未标记的竞争配体浓度递增。未标记脂蛋白浓度应在小于标记脂蛋白Kd值及大于或等于20倍Kd值之间。
(3). 每种浓度的竞争物应设有22孔, 同样也应设有含125I标记脂蛋白的而不是未标记脂蛋白(100%对照)的双孔。含有125I-标记脂蛋白及100倍过量未标记脂蛋白的孔被用来测定125I-标记脂蛋白的非特异结合。应常规用100%及非特异结合对照的四个复判孔。实验开始及结束时分别设2个, 以帮助校正任何系统误差。
(4). 竞争物的5%竞争点(抑制125I-标记脂蛋白结合5%时所需的脂蛋白浓度)可通过如下数学方法确定:将竞争物的浓度(ug/ml)转化为对数值, 将百分比结合值转化为概率单位。概率单位转化可根据发表的表格进行手工计算。几种统计学计算机图表程序也可进行概率单位转换(Plotit, 科学程序公司, Sigma Plot,JandelScientific)。 以概率转换的结合百分比数据为Y轴及以浓度对数为X轴.得到一条直线,通过线性回归可确定50%值。上述计算机图表程序具有可转换、制图及确定和打印50%值的优点。
(三)、用抗体进行受体结合研究的分析法
特异的多克隆和单克隆抗体是研究脂蛋白受体相互作用的有力工具。特异多克隆抗体被用来证实小鼠腹膜巨噬细胞上特有的通过LDL受体介导β-VLDL摄取, 同时证实加入外源性Apo E后β-VLDL能与LDL受体相关蛋白结合。单克隆抗体被用来描绘Apo B100及Apo E的受体结合域以及确定脂蛋白中哪种载脂蛋白与受体结合。这类研究中所用的抗体必须是高亲合力抗体,它与载脂蛋白或受体的亲合力必须大于或等于脂蛋白与受体的亲合力。
————————————————————————————
方案5: 用抗体进行结合研究的方法
(1). 用于受体结合测定的抗体必须是纯化的IgG或Fab片断,因为即使在抗血清或腹水中的少量内源性脂蛋白都可能与125I-标记的脂蛋白竞争, 造成假阳性结果。由于巨噬细胞具有Fc受体, 在研究巨噬细胞培养物的抗体时应采用Fab片断代替IgG。
(2). 若抗体是针对载脂蛋白的, 将抗体与125I-标记脂蛋白在DMEM-Hepes-LPDS中混合, 室温孵育1小时, 冷却溶液, 按方案4所述将其加至预冷的细胞上。 (3). 若抗体是针对受体设计的, 用DMEM-Hepes-LPDS将抗体稀释至要求的浓度, 在冰上冷溶液中与细胞一起预孵育1小时。备好10倍浓缩的125I-标记脂蛋白的DMEM -Hepes-LPDS溶液, 将其直接加入平皿, 在冰上再孵育2-3小时。例如, 要制备1ml培养基中125I-标记LDL终浓度为2ug/ml的溶液, 则加900ul含抗体培养基进行1小时预孵育, 随后加入100ul 20ug/ml的125I标记LDL溶液。
—————————————————————————————
二、结合、内在化(internalization)及降解分析
125I-标记脂蛋白与培养细胞在37℃一起孵育时, 脂蛋白被受体结合、内在化并在溶酶体内降解。125I-标记载脂蛋白降解为小分子多肽和氨基酸, 混匿于培养基之中。大约在37℃下2小时后达到稳定状态, 结合于受体上及含于细胞内的125I-标记脂蛋白的量固定不变。但随孵育时间延长, 培养基中的降解产物持续增长。可采用较长的孵育时间, 通常用5小时或16小时(过夜)孵育。 37℃下试验与4℃下试验(见方案4)相似,但有以下不同:
(1). 脂蛋白与LDL受体的外显结合常数在37℃较高,因而应采用较高浓度的脂蛋白。
(2). 孵育在37℃ 7%CO2培养箱内进行, 所以培养基内不含Hepes,而用含DMEM的NaHCO3缓冲液。
(3). 脂蛋白与培养基必须避免细菌污染, 尤其是过夜孵育更应注意。使用灭菌的DMEM-LPDS, 并用预冲洗过的带醋酸纤维膜(0.45um用于LDL和HDLc, 0.8um用于VLDL和β-VLDL)的注射过滤器滤过脂蛋白贮存液。
(4). 在加入细胞之前, 含脂蛋白的培养基应达到或接近37℃。
(5). 孵育之后, 将细胞置冰上的金属盘中冷却。孵育培养基移出并留作降解分析用(方案7), 洗涤细胞(方案4)。
(一)、结合脂蛋白的释放
在37℃下与125I-标记脂蛋白一起进行孵育的细胞含有表面结合与内在化的脂蛋白, 为了区分它们, 在用0.1M NaOH溶解细胞之前, 应使表面结合的脂蛋白从细胞上被释放。
———————————————————————————
方案6: 表面结合与内在化脂蛋白的测定
(1). 孵育之后, 将细胞冷却(冰上15分钟), 移取孵育培养基作降解测定。 (2). 用冷PBS-BSA迅速洗涤细胞三次,随后进行两次冰上PBS-BSA孵育,各10分钟。
(3). 加入脂蛋白分离试剂, 冰上冷孵育并轻摇1小时。
(a). LDL可用4mg/ml硫酸右旋糖酐或10mg/ml的肝素PBS溶液将其从细胞表面受体上释放出来。
(b). 亲合力比LDL高的脂蛋白, 如含Apo E的脂蛋白, 可用PBS内含30mg/ml的磷酸钠玻璃(六甲基磷酸钠, 9-V030,J,T.Baker或Phosphate Glass, P-8510,Sigma)使之释放。
(4). 移取一份已知量至12×75mm试管,进行r-计数。
(5). 吸出剩下的溶液, 用PBS洗涤单层细胞两次。加入0.1M NaOH, 以后按方案4继续进行。
————————————————————————————
(二)、降解分析
与LDL受体结合后, 125I-标记脂蛋白被内在化并在溶酶体内降解成氨基酸。降解分析法测定释放到组织培养基中的125I-标记酪氨酸。这一分析法的原理是:用三氯醋酸(TCA)沉淀法除去培养基中残留的完整125I-标记脂蛋白, 去除任何游离的125I, 然后测定125I-标记酪氨酸及小分子多肽的放射活性。
—————————————————————————————
方案7: 脂蛋白降解的测定
(1). 对两套12×75mm和一套13×100mm玻璃试管预先编号。
(2). 在其中一套12×75mm试管中加入PBS-BSA溶液,使其与细胞中的孵育培养基总体积为1ml。细胞置于冰上之后,将培养基移入含PBS-BSA液且已编好号的12×75mm试管中, 洗涤单层细胞, 按方案4进行计数。
(3). 用连续加样器在每支装有1ml培养基PBS-BSA的试管内加入200ul 50%TCA, 涡旋混合, 4℃孵育30分钟。
(4). 在4℃下2000g离心15分钟, 形成TCA沉淀。将1.0ml上层清液移入已编好号的13×100mm试管。用连续加样器在每管中加入10ul 40%KI和40ul 30%H2O2。涡旋混合,室温孵育5-10分钟。
(5). 每管中加入2ml CHCl3, 彻底旋混(上层水相应为淡粉红或淡黄色, 不是深褐色,若呈深棕色, 则需重新旋混)。H2O2将[125I]碘化物转化为[125I]碘, 后者可用氯仿萃取。用100g-200g离心5分钟将水相与氯仿相分开, 吸取625ul上层水相至第二套12×75mm试管内, 塞好, 进行放射活性计数。总降解量=c.p.m×2。
『肆』 药物靶点的分布情况线粒体上有多少受体
...这个太难得回答了- =。。。
最终作用于线粒体的药物靶点有很多。。。
包括细胞质中的。。
最典型的就是 线粒体凋亡一类的。。。还有有关呼吸链的。。。有关三羧酸循环的。。有关ROS的等等。。。太多了= =
我觉得你好像混淆了一个 概念。。
靶点不等于受体
受体是相对于配体而言的一个概念。。
而药物的靶点。。怎么说呢,基本上只要是你身体里面特有的物质。就可以作为靶点。。
例如各种蛋白质。。。各种糖蛋白 。。。
『伍』 神经递质与受体结合后神经递质去哪了
神经递质与受体结合后会失活。
进入突触间隙的乙酰胆碱作用于突触后膜发挥生理作用后,就被胆碱酯酶水解成胆碱和乙酸,这样乙酰胆碱就被破坏而推动了作用,这一过程称为失活。
去甲肾上腺素进入突触间隙并发挥生理作用后,一部分被血液循环带走,再在肝中被破坏失活;另一部分在效应细胞内由儿茶酚胺内由儿茶酚胺位甲基移位酶和单胺氧化酶的作用而被破坏失活;但大部分是由突触前膜将去甲肾上腺素再摄取,回收到突触前膜处的轴浆内并重新加以利用。
多巴胺的失活与去甲肾上腺素的失活相似,它也是由儿茶酚胺氧位甲基移位酶和单胺氧化酶的作用而被破坏失活。突触前膜也能再摄取多巴胺加以重新利用。

(5)受体本科线扩展阅读:
乙酰胆碱和胺类递质都在有关合成酶的催化下合成,且合成过程多在胞质中进行,然后储存于突触囊泡内。肽类递质则在基因调控下,通过核糖体的翻译和翻译后的酶切加工等过程而形成。递质与受体结合及生效后很快被通过酶促降解和突触前末梢重摄取等方式消除。
例如,附着于突触后膜的乙酰胆碱酯酶能迅速水解乙酰胆碱为胆碱和乙酸,生成的胆碱则被重摄取回末梢内,用于重新合成新递质。去甲肾上腺素的消除主要通过末梢的重摄取,少量通过酶解失活。肽类递质的消除主要依靠酶促降解。
参考资料来源:网络-神经递质
参考资料来源:网络-脑神经递质
『陆』 死亡受体及线粒体介导的caspase活化通路有何异同
死亡受体家族(DeathReceptorFamily): 该家族的胞内部分都含有约80个氨基酸残基组成的介导凋亡区域,即死亡结构域,其家族成员包括Fas/CD95、DR5、DR4、DR3和TNFRl。当受体与相应的配体结合时,将聚合形成三聚体。死亡受体三聚体通过死亡结构域。
『柒』 受体影响写作活动的方式与要素有哪些
第一节 写作主体的“ 受体意识”
写作“受体”的阅读(欣赏),是写作主体劳动成果的接受者,这与读者(欣赏者)的身份是一致的。但受体与读者是有区别的。它们的区别表现在哪些地方呢?
传统讨论的受体,是读者。写作主体也阅读自已的劳动成果,阅读自已的作品,不叫受体。只有去阅读别人的作品(文本),我们才称之曰“受体”。因为作家、诗人也要阅读与欣赏。
写出来的文本是要给人看的。如同你生产的产品,要拿出去经销。那些消费者需要你的产品么。一般来讲,写作者要研究受体的心态、爱好、趣味。一句话,你就是要研究读者。有人说我写的文章是给两百年以后的人看的。你信吗?
一、受体的含义及受体意识的作用
(一)“受体”的含义
1、含义。写作受体即写作行为活动的接受对象,也就是读者。从信息传播的角度来看,受体是信息传递的必要组成部分。一个信息传递过程是以预先设定的交际双方作为前提和基础的。信息传递的主体把信息置入一定的载体传递出去,直到受体把信息从一定的载体和载体符号中转换出来,传递过程才算完成。这表明,尽管传递信息是主体独自决定的行为,但这一行为的付诸实现,却必须在交际的另一方——受体愿意且又可能进入交际过程的前提下才具有现实性。这使受体在交际过程中获得了不可或缺的地位,使受体与主体构成相反相成的伙伴关系。在这种关系中,受体在主体通过载体发出信息之后成为完全主动的一方,他可以自由选择如何处理主体发出的信息。主体只能在传递信息的同时,在信息载体中为受体尽可能充分地接受信息提供某些条件,除此之外,别无它法。
写作受体是指从写作这种活动中接受信息的人。它的存在与否关系到写作活动能否最终完成,因此写作受体是写作系统中不可或缺的一个要素。英国文豪约翰生甚至说:“写作的唯一目的,是帮助读者更能享受或忍受生活。”(转引自《余光中散文》)受体是接受主体之简称。即诗的阅读、诗的批评。广义上包括诗的传播主体,即诗的创造主体与接受主体之间的传播媒介者。
2、受体与读者(欣赏者)的区别
读者是相对于文章而存在的,其阅读习惯、审美趋向等直接受制于写作主体的表达,尽管他们也可以通过一定的途径将自己的感受和意见反馈到作者那里,但其阅读与反馈带有“滞后性”。而受体是相对于写作活动中的主体而存在的。受体对写作活动的参与虽然同样具有被动特点,但他们的变被动为主动的行为特征更加明显,并且他们介入的时间也不再是过去单纯的“阅读后”,在现代传媒技术条件下,他们甚至可以在写作行为中实施自己的介入。而写作活动是一项特殊的活动,即使写作主体已经“脱稿”,也并不意味着这一次写作活动的结束,它还必须等待写作受体的参与(阅读认可),没有受体参与的写作活动是不完全的。有时来自受体方面的影响,在某些写作活动中直接产生决定性作用。比如秘书为领导者代拟讲话稿。
随着写作活动的结束,写作的主体不复存在,则受体也自动转变为传统意义上的读者了。
1)读者是相对于文章而存在,受体相对于写作主体而存在。
2)“受体”对写作活动的介入的时间不再是单纯的“阅读后”,在现代传媒条件下,他们可以在主体写作过程中“介入”。(如秘书为领导写讲话稿,领导或班子成员在秘书写作前和写作中会提出建设性的意见;如新闻报导,受众会参与,热线电话。没有受体参与的写作活动是不完全的。如电视剧写完开拍也会边拍边接纳受体的意见)。
3) 写作活动结束,其写作主体不复存在,则受体转变为传统意义上的读者(欣赏者)。
3、受体的分类
从最直观的层面上看,受体”指的就是文章的接受者,包括文章的把关人(如编辑、领导)和广大的读者。这个层面的“受体”,粗略地可分为:
1)指定读者、特定读者、一般读者、批审读者
“指定读者”,指文章所指定的读者,它一般是某一个具体的人,或某一具体的群体。如日常书信的写作,它的读者是收信人;报请一类公文的写作,它的读者是自己的上级;通知决定一类公文,它的读者是自己的下属;规章制度一类文书的制作,它的读者对象是单位、组织的每一个成员。“特定读者”,指读物所限定的“消费者”,它不是指向某一个人或某一个具体的群体,而是指向“某一类”。如科技文章的写作,它的读者是研究相关问题的专家和专业技术人员;少儿读物,它的阅读对象是青少年;“经济消息”,它的读者是从事经济工作的有关人员。“一般读者”,指读物所广泛适应的“消费者”,读物对他们的年龄、性别、职业、文化程度、身份都没有要求,只要具有一定的阅读能力,并且有这方面的阅读兴趣,就可以拿来读。“批审读者”,主要指文章的把关人,包括单位领导人、报纸杂志以及出版社的编辑等。作者写作,通常会考虑编辑是否同意的因素。一些特殊的文体,如公文,还得考虑领导的意志。
2)基本读者、可能性读者、理想读者、非理想读者
“基本读者”指自己读物所应拥有的读者。“可能性读者”不在基本读者之列,但由于种种原因,有些读者可能会读到自己的文章,成为自己的“可能性读者”。“理想读者”是指完全能理解自己的写作意图、能接受自己独特的表达方式的读者,也就是平时所说的“知音”、“粉丝”。“非理想读者”与此相反,是在理解自己写作意图及表达方式方面存在一定困难的读者。
3)多层读者
多层读者的叠用,某种意义上说是一种叙述策略。它利用特定读者的“接受场”以达到自己预定的叙述效果。如朱光潜写《谈美书简》,采用的是书信体,茅盾写《腐蚀》,采用的是日记体等。
由于划分的标准不同,我们还可以从地区、性别、年龄上划分。如港台读者、大陆读者、国外读者;男性读者、女性读者;老年读者,少儿读者。等。
『捌』 细胞膜上的受体蛋白也走分泌蛋白路线吗内质网高尔基体什么的
细胞膜上的受体蛋白的合成和运输与
分泌蛋白
相同,都是在
内质网
上的
核糖体
合成
肽链
,先进入内质网加工,形成有一定空间结构的蛋白质,再通过
囊泡
运输到
高尔基体
进一步加工成熟,高尔基体通过囊泡将蛋白质运输到细胞膜上。
『玖』 什么是受体介导的内吞作用有什么特点基本过程怎样
目的
观察刀豆素A(ConA)与小鼠腹腔巨噬细胞表面ConA受体结合、内吞、转运及巨噬细胞自噬、凋亡的形态学变化,以探讨受体介导内吞与自噬体形成和细胞凋亡之间的关系.方法
用辣根过氧化物酶(HRP)标记ConA(ConA-HRP)与小鼠腹腔巨噬细胞共孵育,不同时间取出部分巨噬细胞,制备电镜标本,观察.结果透射电镜观察表明:ConA的内吞属于受体介导内吞;形成的内吞体有泡状、管状及双层膜的线状等形式;双层膜的线状结构包裹部分胞质和细胞器,形成自噬体;自噬体与溶酶体融合,而后巨噬细胞凋亡.结论受体介导内吞和自噬同凋亡之间存在一定的关系.
『拾』 通道蛋白,载体蛋白,受体蛋白三者之间的差别
差别:通道蛋白参与的只是被动运输,在运输过程中并不与被运输的分子或离子相结合,也不会移动,并且是从高浓度向低浓度运输,所以运输时不消耗能量。
载体蛋白参与的有主动转运和易化扩散,在运输过程中与相应的分子特异性结合,自身的构型会发生变化,并且会移动。通道蛋白转运速率与物质浓度成比例,且比载体蛋白介导的转运速度更快。
通道蛋白其结构和功能状态在细胞内外理化因子作用下,能在数毫秒至数十毫秒的时间内迅速激活开放,随后迅速失活或关闭,载体蛋白无此特性。

分类
通道蛋白可以是单体蛋白,也可以是多亚基组成的蛋白,它们都是通过疏水的氨基酸链进行重排,形成水性通道。通道蛋白本身并不直接与小的带电荷的分子相互作用,这些小的带电荷的分子可以自由的扩散通过由脂双层中膜蛋白带电荷的亲水区所形成的水性通道。
通道蛋白的运输作用具有选择性,所以在细胞膜中有各种不同的通道蛋白。通道蛋白参与的只是被动运输,在运输过程中并不与被运输的分子结合,也不会移动,并且是从高浓度向低浓度运输,所以运输时不消耗能量。
以上内容参考:网络-通道蛋白
